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一种测定透明质酸含量的方法

发明公布  在审
申请(专利)号:CN201811508968.X国省代码:山东 37
申请(专利权)人:华熙福瑞达生物医药有限公司;山东华熙海御生物医药有限公司
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摘要:
本发明提供一种测定透明质酸含量的方法,其包括:利用透明质酸酶对包含透明质酸的待测样品进行酶解;使用用于分析有机酸的离子交换柱,利用不含盐的流动相,检测由透明质酸酶酶解后的透明质酸;以及基于检测结果计算该待测样品中所含的透明质酸的含量。本发明方法中的色谱柱的耐用性好,且流动相中不需要添加缓冲盐,能够有效地检测透明质酸。

主权项:
1.一种测定透明质酸含量的方法,其包括:利用透明质酸酶对包含透明质酸的待测样品进行酶解;使用用于分析有机酸的离子交换柱,利用不含盐的流动相,检测由透明质酸酶酶解后的透明质酸;以及基于检测结果计算该待测样品中所含的透明质酸的含量。


说明书

一种测定透明质酸含量的方法

技术领域

本发明涉及透明质酸的检测领域,具体涉及一种测定透明质酸含量的方法。

背景技术

透明质酸(Hyaluronic acid,简称HA)又名玻璃酸,是由(1-3)-2-乙酰氨基-2-脱
氧-D-葡萄糖(1-4)-D-D-葡萄醛酸双糖重复单位所组成的高分子量的直链粘多糖。1934年
由Meyer等人从牛玻璃球眼中首次提取获得。

透明质酸以其独特的分子结构和理化性质在机体内显示出多种重要的生理功能,
如润滑关节,调节血管壁的通透性,调节蛋白质,水电解质扩散及运转,促进创伤愈合等。尤
为重要的是,透明质酸具有特殊的保水作用,是目前发现的自然界中保湿性最好的物质,被
称为理想的天然保湿因子,由于HA具有良好的保湿性、粘弹性、渗透性和延展性,同时无任
何免疫原性和毒性,被广泛应用于化妆品、食品、医药和临床治疗等行业领域。

大分子透明质酸可被细菌来源的透明质酸酶彻底水解为不饱和透明质酸双糖(Δ
DiHA),ΔDiHA在232nm处有特异性紫外吸收,可通过色谱柱与其它成分分离后用外标法检
测其含量。目前透明质酸常用的检测方法有HPLC法、比色法、CTAB比浊法和咔唑显色法。例
如专利文献1公开了用咔唑显色法定量检测透明质酸发酵液中透明质酸含量的方法,但在
检测前需要除去发酵液中的残留杂糖、色素等干扰因素。另外,在专利文献2中公开了一种
交联透明质酸或其盐的交联度的测定方法,其中使用了分子筛色谱柱,流动相为0.1~
1mol/L的KCl-磷酸盐缓冲液。

现有技术文献

专利文献

专利文献1:CN108362686A

专利文献2:CN107561179A

发明内容

在色谱法中,分离寡糖类物质一般选用氨基键和柱,此种色谱柱填料易水解,耐用
性差,且流动相(水相)中需要添加像专利文献2那样的高浓度的缓冲盐才可将透明质酸双
糖洗脱,长期使用高盐流动相会对液相管路系统造成损伤。因此,需要开发一种不使用上述
高浓度的缓冲盐,能够有效地检测透明质酸的方法。

本发明人为了解决上述问题,在日常分析工作中偶然发现一类用于分析有机酸的
离子交换柱能够将透明质酸双糖与其它小分子物质分离,柱效高,且耐用性好,流动相中不
需要添加缓冲盐,由此建立了上述方法,用于复杂配方保健食品中HA含量的检测。

为了解决上述技术问题,本发明专利采用的技术方案是:

1.一种测定透明质酸含量的方法,其包括:

利用透明质酸酶对包含透明质酸的待测样品进行酶解;

使用用于分析有机酸的离子交换柱,利用不含盐的流动相,检测由透明质酸酶酶
解后的透明质酸;以及

基于检测结果计算该待测样品中所含的透明质酸的含量。

2.根据项1所述的方法,其中,所述用于分析有机酸的离子交换柱为阳离子交换色
谱柱。

3.根据项1或2所述的方法,其中,所述用于分析有机酸的离子交换柱为磺化交联
的苯乙烯二乙烯基苯共聚物为填充剂的强阳离子H+型交换柱。

4.根据项1~3中任一项所述的方法,其中,所述用于分析有机酸的离子交换柱为
MCI GEL CK08EH色谱柱(8×300mm,5μm)或SilGreen GH0830078H色谱柱。

5.根据项1~4中任一项所述的方法,其中,高效液相色谱的流动相为弱酸溶液。

6.根据项5所述的方法,其中,高效液相色谱的流动相为磷酸溶液或乙酸溶液,优
选浓度为0.01wt%~1.2wt%的磷酸溶液或乙酸溶液。

7.根据项1~6中任一项所述的方法,其中,流动相的流速为0.3~1.0ml/min,进一
步优选为0.4~0.8ml/min,例如为0.6ml/min。

8.根据项1~7中任一项所述的方法,其中,高效液相色谱中使用的色谱柱的柱温
为25℃~95℃,优选为30℃~80℃,更进一步优选为40℃~60℃。

9.根据项1~8中任一项所述的方法,其中,在高效液相色谱中检测波长为220~
235nm,例如为232nm。

10.根据项1~9中任一项所述的方法,其中,在高效液相色谱中分析时样品的进样
量为5~100μL,例如为20μL。

11.根据项1~10中任一项所述的方法,其中,所检测的透明质酸的溶液中柠檬酸
的含量低于检测下限,优选小于0.1‰。

12.根据项1~11中任一项所述的方法,其用于保健食品、药品、医疗器械、化妆品、
毛发护理用品、口腔护理用品、纸品中透明质酸含量的测定。

13.用于分析有机酸的离子交换柱在透明质酸含量检测中的使用。

发明的效果

本发明使用透明质酸酶对样品进行预处理,并结合液相色谱分离技术得到样品含
量,方法特异性高。

按照本发明的方法,能够防止用于糖的分析柱例如氨基柱的填料易水解、耐用性
差,以及长期使用高盐流动相会对液相管路系统造成损伤的问题,能够更有效地检测透明
质酸。

附图说明

图1为实施例1的液相色谱图。

图2为参考例1的液相色谱图。

图3为参考例2的液相色谱图。

发明的具体实施方式

本文中的术语“酶解法”,是利用活性酶来水解特定的某种物质,这种方法可用于
一般的生物实验中,酶(enzyme)是由活细胞产生的、对其底物具有高度特异性和高度催化
效能的蛋白质或RNA。酶是一类极为重要的生物催化剂(biocatalyst)。由于酶的作用,生物
体内的化学反应在极为温和的条件下也能高效和特异地进行。透明质酸酶
(hyaluronidase,HAase)是能使透明质酸产生低分子化作用酶的总称,本发明使用透明质
酸酶可特异性裂解透明质酸钠双糖单位之间的糖苷键,终产物为带有一个双键的透明质酸
钠二糖。在本发明中使用的透明质酸酶可以是任何现有技术中已知的能够裂解透明质酸钠
双糖单位之间的糖苷键的酶,没有任何限制,可以购买市场上常用的用于降解透明质酸的
酶来使用,但最优选的酶限定于细菌来源的裂解酶,因为只有这样才可以将透明质酸彻底
降解为带双键的二糖单位。市面上能买到的酶基本都是动物睾丸提取的透明质酸酶,最终
降解产物是四糖和六糖的混合物,而且不易达到彻底降解效果。

色谱法(chromatography)又称“色谱分析”、“色谱分析法”、“层析法”,是一种分离
和分析方法,在分析化学、有机化学、生物化学等领域有着非常广泛的应用。色谱法利用不
同物质在不同相态的选择性分配,以流动相对固定相中的混合物进行洗脱,混合物中不同
的物质会以不同的速度沿固定相移动,最终达到分离的效果。

高效液相色谱法(High Performance Liquid Chromatography\HPLC)又称“高压
液相色谱”、“高速液相色谱”、“高分离度液相色谱”、“近代柱色谱”等。高效液相色谱是色谱
法的一个重要分支,以液体为流动相,采用高压输液系统,将具有不同极性的单一溶剂或不
同比例的混合溶剂、缓冲液等流动相泵入装有固定相的色谱柱,在柱内各成分被分离后,进
入检测器进行检测,从而实现对试样的分析。

HPLC的固定相有以下几种:(1)硅胶表面键合或涂渍各种聚合物;(2)其他氧化物
表面涂渍聚合物;(3)无孔单分散填料;(4)有机高聚填料;(5)灌注色谱填料;和(6)手性固
定相填料。流动相是影响液相色谱的关键因素,高效液相色谱法中的流动相主要用水性溶
剂、有机溶剂或它们的混合液。

离子交换柱是指用来进行离子交换反应的柱状压力容器,离子交换反应是指离子
交换剂功能基中的阳离子或阴离子与溶液中同性离子进行可逆交换的过程。离子交换剂分
为有机和无机的离子交换剂。无机离子交换剂分为天然和例如合成沸石等人造的材料。有
机离子交换剂中有离子交换树脂,离子交换树脂按照物理结构分类可以分为孔径为5nm的
凝胶型和孔径为20-100nm的大孔型,按照合成的树脂所用原料单体分类可以分为苯乙烯
系、酚醛系、丙烯酸系、环氧系、乙烯吡啶系等。离子交换树脂最常用的分类是依据树脂离子
交换功能团分类,分为包括强酸性阳离子型离子交换树脂、弱酸性阳离子型离子交换树脂、
强碱性阴离子型离子交换树脂和弱碱性的阴离子型离子交换树脂以及其他类型。

在本发明中,利用的是能够用于分析有机酸的离子交换柱,进一步优选阳离子交
换色谱柱。

以下将对本发明做以详细说明。

根据本发明的一个方面,提供一种酶解法联合高效液相色谱法测定透明质酸含量
的方法,其包括:利用透明质酸酶对包含透明质酸的待测样品进行酶解;使用用于分析有机
酸的离子交换柱,利用不含盐的流动相,检测由透明质酸酶酶解后的透明质酸;以及基于检
测结果计算该待测样品中所含的透明质酸的含量。

本发明的方法的特征在于:使用用于分析有机酸的离子交换柱,检测由透明质酸
酶酶解后的透明质酸。由此能够防止用于糖的分析柱例如氨基键合柱的填料易水解、耐用
性差,以及长期使用高盐流动相会对液相管路系统造成损伤的问题。

本发明使用透明质酸酶对样品进行预处理,并结合液相色谱分离技术得到样品含
量,方法特异性高。

在一个具体的实施方式中,上述用于分析有机酸的离子交换柱可以为阳离子交换
色谱柱,特别可以为磺化交联的苯乙烯二乙烯基苯共聚物为填充剂的强阳离子钙型交换
柱。例如为MCI GEL CK08EH色谱柱(8×300mm,5μm)。MCI GEL CK08EH色谱柱是日本三菱化
学生产的属于CK08E系列的阳离子交换色谱柱,是磺化交联的苯乙烯二乙烯基苯共聚物为
填充剂的强阳离子氢型交换柱,可用于分离糖类、羧酸、聚醇等。另外,SilGreen
GH0830078H色谱柱中固定相是8%交联度的磺化苯乙烯-二乙烯基苯树脂,常温下用稀酸作
为流动相,不仅能够分离样品中的碳水化合物,而且能够分离有机酸和醇。通过使用这样的
色谱柱,比以往的用于检测透明质酸的色谱柱的耐用性更强。

在一个具体的实施方式中,高效液相色谱的流动相为弱酸溶液,优选为0.01%~
1.2wt%的磷酸溶液或乙酸溶液。其中,尤其是乙酸浓度高会影响基线稳定性。在本发明中,
由于高效液相色谱的流动相中不添加任何盐成分,由此能够有效地防止长期使用高盐流动
相会对液相管路系统造成损伤的问题。

在一个具体的实施方式中,流动相的流速为0.3~1.0ml/min,,进一步优选为0.4
~0.8ml/min。高效液相色谱中使用的柱温为25℃~95℃,优选为30℃~80℃,更进一步优
选为40℃~60℃。

检测波长为220~235nm,例如为232nm,进样量为5~100μL,例如为20μL。在该条件
下能够更加准确地测定透明质酸。

在一个具体的实施方式中,所检测的透明质酸的溶液的柠檬酸的含量低于检测下
限,例如小于0.1‰。检测这样的柠檬酸的含量低于检测下限的溶液的透明质酸不易受到干
扰,更加准确。在某些保健食品配方中需要添加柠檬酸来调节产品的风味、酸度等指标,此
外柠檬酸也具有一定的防腐作用。但在本发明提到的色谱条件下柠檬酸和降解后的透明质
酸钠即透明质酸钠二糖色谱行为相近,如果配方中柠檬酸含量较高,柠檬酸的色谱峰会对
HA二糖的色谱峰产生干扰。因此,需要限定本发明所检测的透明质酸的溶液的柠檬酸的含
量。

在一个具体的实施方式中,本发明的方法用于保健食品中透明质酸含量的测定。
保健食品又称为功能性食品,保健食品是指声称具有特定保健功能或者以补充维生素、矿
物质为目的的食品,即适宜于特定人群食用,具有调节机体功能,不以治疗疾病为目的,并
且对人体不产生任何急性、亚急性或者慢性危害的食品。

在一个具体的实施方式中,本发明的方法用于药品或医疗器械中透明质酸含量的
测定。透明质酸可作为药品或医疗器械的原料或辅料,用于眼用制剂、关节内制剂、术后防
粘连剂、创伤愈合外用制剂及软组织填充剂等医药产品。

在一个具体的实施方式中,本发明的方法用于化妆品中透明质酸含量的测定。化
妆品是指以涂抹、喷洒或者其他类似方法,散布于人体表面的任何部位,如皮肤、毛发、指趾
甲、唇齿等,以达到清洁、保养、美容、修饰和改变外观,或者修正人体气味,保持良好状态为
目的的化学工业品或精细化工产品。化妆品中的透明质酸具有持久保湿、润滑、防晒、增稠、
稳定乳化作用、抗衰老,及晒后修复等作用。

在一个具体的实施方式中,本发明的方法用于毛发护理用品中透明质酸含量的测
定。其中,根据适用对象不同,毛发护理用品又可分为宠物毛发护理用品和人类头发护理用
品。根据产品功效不同,毛发护理用品又可包括防脱发用品、促进头发毛囊再生产品、毛发
改善产品、烫发产品、染发产品以及毛发定型产品,具有保湿、抑菌、修复、防脱发、促进毛囊
再生等作用。

在一个具体的实施方式中,本发明的方法用于口腔护理用品中透明质酸含量的测
定。其中,口腔护理用品包括治疗口腔溃疡的组合物、种牙产品、洗牙用产品、缓解口腔干燥
的产品、口腔清洁产品、唾液代用品等,具有清洁口腔、抑菌、抗炎、修复、保湿、增稠、诱导骨
再生等作用。

利用本发明的测定透明质酸含量的方法,使用用于分析有机酸的离子交换柱,能
够利用不含盐的缓冲溶液将透明质酸双糖洗脱,能够减轻对液相管路系统造成的损伤,更
长时间有效地检测透明质酸。利用本发明的方法,其中使用的色谱柱可以长期运行,也不会
出现堵塞等情况,不需要经常对色谱柱等进行清洗,持续运行时间超过3600分钟。

实施例

以下利用实施例对本发明做以详细说明。然而应当理解,可以以各种形式实现本
发明而不应被这里阐述的实施例所限制。相反,提供这些实施例是为了能够更透彻地理解
本发明,并且能够将本发明的范围完整的传达给本领域的技术人员。在本发明中列举的数
值范围均包括该数值范围的两个端点的数据,也包括该数值范围中具体的每一个数值,并
且该数值可以与端点任意组合组成新的小范围。

实施例1

1试剂及材料

磷酸二氢钠(国药集团化学试剂有限公司)、磷酸氢二钠(国药集团化学试剂有限
公司)、磷酸(国药集团化学试剂有限公司)

透明质酸(HA)对照品(华熙福瑞达生物医药有限公司)、透明质酸酶(HAase)(华熙
福瑞达生物医药有限公司)

2色谱条件

色谱柱:MCI GEL CK08EH色谱柱(三菱化学,8×300mm,5μm);

流动相:1%磷酸溶液;

流速:0.6ml/min;

进样量:20μL;柱温:40℃;

检测波长:232nm。

色谱条件的说明:

其中,流动相、流速、柱温均为色谱柱使用说明推荐参数,进样量为常用值。检测波
长为HA二糖的最大紫外吸收波长。

3溶液配制

酶解缓冲液:称取磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)27.4g、磷酸氢二钠(Na2HPO4·
12H2O)8.8g置1000mL容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀,得0.2mol/L Na2HPO4-NaH2PO4缓冲
液。上述缓冲液稀释40倍后得到酶解缓冲液(5mM/L Na2HPO4-NaH2PO4缓冲液,pH6.0)。

对照品溶液:精密称取透明质酸钠对照品约50mg于50mL容量瓶中,酶解缓冲液溶
解并定容至刻度,混匀。取上述溶液0.2mL置于10mL容量瓶中,加入0.5mL透明质酸酶,混匀,
密封,42℃酶解2h,煮沸2min使酶失活,流动相定容至刻度,0.22μm滤膜过滤,即得对照品溶
液。

供试品(也可以称为待测样品)溶液:精密量取供试品溶液0.5mL,加入1mL透明质
酸酶,混匀,密封,42℃酶解2h,煮沸2min使酶失活,流动相定容至10mL,0.22μm滤膜过滤,即
得供试品溶液。

4测定

分别取对照品,供试品溶液20μL进样,按照上述色谱条件进行检测,以外标法峰面
积计算供试品溶液中透明质酸钠含量。

5计算

按以下公式计算供试品溶液中的HA含量:


式中,X—供试品溶液中HA含量,mg/mL

As—供试品溶液峰面积

Ar—对照品溶液峰面积

Wr—对照品称样量,mg

Z—对照品含量

h—对照品干燥失重

另外,理论塔板数(N)是反映色谱柱的柱效参数,计算公式为:

N=5.54×(保留时间/半峰宽)2

理论塔板数一般由色谱工作站数据处理软件自动计算给出。

6结果

供试品中HA含量检测结果如表1所示。另外,色谱图如图1所示。

表1实施例1中供试品的色谱分析结果



以上述条件持续对不同的待测样品进行检测,色谱柱合计运行时间超过3600分
钟,色谱柱仍然正常运行。

实施例2

将实施例1中的色谱的流动相改变为0.5wt%磷酸溶液,将流速改变为0.4ml/min
等,其他条件与实施例1相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。供试品中HA含量检测结
果如表2所示

表2实施例2中供试品的色谱分析结果



实施例3

将实施例1中的色谱的流动相改变为0.01%乙酸溶液,将柱温改为80℃,其他条件
与实施例1相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。供试品中HA含量检测结果如表3所示。

表3实施例3中供试品的色谱分析结果





实施例4

将流速改变为0.5ml/min,将柱温改为30℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品
溶液中透明质酸钠含量。供试品中HA含量检测结果如表4所示。

表4实施例4中供试品的色谱分析结果



实施例5

将流速改变为0.3ml/min,柱温改变为45℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品
溶液中透明质酸钠含量。供试品中HA含量检测结果如表5所示

表5实施例5中供试品的色谱分析结果



实施例6

将流速改变为1.0ml/min,将实施例1中的色谱的检测波长改变为235nm,其他条件
与实施例1相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。供试品中HA含量检测结果如表6所示。

表6实施例6中供试品的色谱分析结果



实施例7

将实施例1中的供试品溶液改为取含HA片剂10片,碾碎研磨后精密称取1g至10mL
容量瓶中,加入适量酶解缓冲液使之充分溶解,过滤,取滤液0.5mL酶解,将流速改变为
0.8ml/min,进样量改变为100μl,将柱温改变为60℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品
溶液中透明质酸钠含量。供试品中HA含量检测结果如表7所示。

表7实施例7中供试品的色谱分析结果



实施例8

将实施例1中的色谱柱改变为SilGreen GH0830078H色谱柱,其他条件与实施例1
相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表8所示。

表8实施例8中供试品的色谱分析结果





实施例9

将实施例1中的色谱的进样量改变为50μl,将实施例1中的色谱的检测波长改变为
220nm,其他条件与实施例1相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表9所示。

表9实施例9中供试品的色谱分析结果



实施例10

将实施例1中的色谱柱的柱温改变为95℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品
溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表10所示。

表10实施例10中供试品的色谱分析结果



实施例11

将实施例1中的色谱的流动相改变为1.2wt%磷酸溶液,将色谱柱的柱温改变为25
℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表11所示。

表11实施例11中供试品的色谱分析结果



实施例12

将实施例1中的色谱的流动相改变为1wt%乙酸溶液,流速变为0.7ml/min,进样量
变为5μl,色谱柱的柱温改变为50℃,检测波长设为235nm,其他条件与实施例1相同,测定供
试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表12所示。

表12实施例12中供试品的色谱分析结果



比较例1

将实施例1中的色谱柱换成氨基柱,检测条件为:

色谱柱:Luna NH2(4.6×250mm,5μm);

流动相:0.4mol/L NaH2PO4溶液;流速:0.6ml/min;进样量:20μL;

柱温:35℃;检测波长:232nm。

供试品中HA含量检测结果如表8所示。

表8比较例1中供试品的色谱分析结果



比较例2

在实施例1中的色谱的流动相中添加0.15wt%的磷酸二氢钠,其他条件与实施例1
相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表13所示。

表13实施例13中供试品的色谱分析结果



比较例3

将实施例1中的色谱的流动相中改变为1.6wt%磷酸溶液,其他条件与实施例1相
同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表14所示。

表14实施例14中供试品的色谱分析结果





比较例4

将实施例1中的色谱的流动相中改变为水,流速变为1.5ml/min,进样量变为10μl,
其他条件与实施例1相同,测定供试品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表15所示,HA二糖在此色谱条件下没有色谱峰。

表15实施例15中供试品的色谱分析结果



比较例5

将实施例1中的色谱的柱温改变为100℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品溶
液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表16所示。此条件下流动相接近沸腾状态,造成色谱
系统里产生大量气体,检测无法进行。

表16实施例16中供试品的色谱分析结果



比较例6

将实施例1中的色谱的检测波长改变为240nm,其他条件与实施例1相同,测定供试
品溶液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表17所示。在此波长下HA二糖吸收较弱,色谱峰面积
小,检测结果误差较大。

表17实施例17中供试品的色谱分析结果



比较例7

将实施例1中的色谱的柱温改变为20℃,其他条件与实施例1相同,测定供试品溶
液中透明质酸钠含量。

供试品中HA含量检测结果如表18所示。在此温度下色谱柱柱效明显降低,检测结
果误差较大。

表18实施例18中供试品的色谱分析结果



参考例1

将实施例1中的供试品溶液改变为不含HA的空白样品溶液,其他条件与实施例1相
同,测定供试品溶液的色谱图。结果如图2所示。

参考例2

将实施例1中的供试品溶液改变为HA二糖的对照样品溶液,其他条件与实施例1相
同,测定供试品溶液的色谱图。结果如图3所示。

空白样品为配方中不加入HA的样品,空白样品中没有和HA二糖保留时间
(10.3min)一致的色谱峰,说明配方中其它成分不会干扰HA的测定。



由表9可知,本发明的测定透明质酸含量的方法,理论塔板数高,能够有效检测透
明质酸,而且不像表10所示的比较例1那样在流动相(水相)中需要添加高浓度的缓冲盐才
可将透明质酸双糖洗脱,能够减轻对液相管路系统造成的损伤,更长时间有效地检测透明
质酸。

另外,如表10所示,比较例2由于相比于实施例1在流动相中添加了盐,虽然理论塔
板数较高,但是色谱柱合计运行时间小于2000min,这是由于盐对液相管路系统造成了损
伤,而无法长时间有效地检测透明质酸。

比较例3中将流动相的磷酸溶液浓度提高到了1.6wt%,虽然理论塔板数较高,但
是色谱柱合计运行时间小于1000min,这是由于磷酸溶液浓度过高,不仅影响基线稳定性,
而且无法长时间有效地检测透明质酸。

比较例4中将流动相改为水,流速变为1.5ml/min,HA二糖在此色谱条件下没有色
谱峰。比较例5中将色谱的柱温改变为100℃,由于柱温过高而无法检测。

比较例6中将检测波长改变为240nm,在此波长下HA二糖吸收较弱,色谱峰面积小,
检测结果误差较大。比较例7中将色谱的柱温改变为20℃,在此温度下色谱柱柱效明显降
低,检测结果误差较大。

而与这些比较例相对,在实施例的液相色谱条件下能够有效地检测透明质酸。<>...

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图1
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